Везде

ОБНБиология внутренних вод Inland Water Biology

  • ISSN (Print) 0320-9652
  • ISSN (Online) 3034-5227

ОСОБЕННОСТИ ЦИТОАРХИТЕКТОНИКИ ЭРИТРОЦИТОВ ЛЯГУШКИ ОЗЕРНОЙ ПРИ ТЕМПЕРАТУРНОЙ НАГРУЗКЕ В ОПЫТАХ

Вы можете
Код статьи
S3034522725060175-1
DOI
10.7868/S3034522725060175
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Чернявских С.Д.
  • Аффилиация: Белгородский государственный национальный исследовательский университет
Рощупкина И.С.
  • Аффилиация:
    Белгородский государственный национальный исследовательский университет
    Федеральный центр охраны здоровья животных
Присный А.А.
  • Аффилиация:
    Белгородский государственный национальный исследовательский университет
    Федеральный научный центр — Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрабина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук
Ван Тхань Во
  • Аффилиация: Педагогический университет Хошимина
Том/ Выпуск
Том 18 / Номер выпуска 6
Страницы
1187-1193
Аннотация
Методом атомно-силовой микроскопии изучены морфометрические и биофизические свойства эритроцитов лягушки озерной (Pallas, 1771), инкубированных при разных температурах в опытах . Установлено, что снижение температуры инкубации (до 5°C) не вызывает изменений морфометрических параметров клеток, повышение температуры инкубации (до 40°C) – способствует уменьшению вышеназванных параметров по сравнению с инкубацией при контрольной температуре (20°C). При понижении и повышении температуры инкубации по сравнению с контрольной температурой увеличивается количество глобулярных выступов на поверхности эритроцитов и повышается их высота. При пониженной и повышенной температурах инкубации наблюдается увеличение количества и повышение диаметра углублений на поверхности эритроцитов, а также уменьшение глубины выступов. Снижение температуры инкубации не вызывает изменений морфометрических параметров эритроцитов по сравнению с инкубацией при контрольной температуре, тогда как в условиях повышенной температуры инкубации эти параметры достоверно снижаются. Инкубация эритроцитов при 40°C способствует уменьшению величины их объема и площади по сравнению с контрольной температурой. При уменьшении температуры инкубации до 5°C модуль Юнга ядерных эритроцитов возрастает по сравнению с контрольной температурой, инкубация ядерных эритроцитов при температуре 40°C вызывает незначительное изменение данного показателя по сравнению с контролем. Адгезия к нанозонду мембраны ядерных эритроцитов повышается после инкубации при 5°C и уменьшается после инкубации при 40°C. Установлено, что при действии температурного фактора происходит приспособительные изменения в физиологических свойствах плазмалеммы и морфометрических показателях клеток.
Ключевые слова
эритроциты температура адгезия упругость морфометрические параметры количество глобулярных выступов количество углублений диаметр углублений
Дата публикации
27.01.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
18

Библиография

  1. 1. Боровская Н.К., Кузнецова Э.Э., Горохова В.Г. и др. 2010. Структурно-функциональная характеристика мембраны эритроцита и ее изменения при патологиях разного генеза // Бюл. ВСНЦ СО РАМН. № 3(73). С. 334.
  2. 2. Голованов В.К. 2013. Температурные критерии жизнедеятельности пресноводных рыб. М.: Изд-во ПОЛИГРАФ-ПЛЮС.
  3. 3. Дунаев Е.А., Орлова В.Ф. 2012. Земноводные и пресмыкающиеся России. Атлас определитель. М.: Фитон+.
  4. 4. Евдонин А.Л., Медведева Н.Д. 2009. Внеклеточный белок теплового шока 70 и его функции // Цитология. Т. 51. № 2. С. 130.
  5. 5. Кармен Н.Б., Милютина H.П., Орлов А.А. 2005. Структурно-функциональное состояние мембран эритроцитов и его коррекция лерфтораном // Бюл. экспериментальной биологии и медицины. Т. 139. № 3. С. 517.
  6. 6. Ковальчук Л.А., Черная Л.В., Мищенко В.А. и др. 2022. Гематологические и биохимические параметры инвазивного вида земноводных Pelophylax ridibundus (Amphibia, Anura), интродуцированного в водные объекты Среднего Урала // Биология внутр. вод. № 4. С. 431. https://doi.org/10.31857/S0320965222040155
  7. 7. Луценко М.Т., Андриевская И.А. 2015. Морфофункциональные изменения в эритроидных элементах в норме и при патологии: Монография. Благовещенск: Дальневосточный науч. центр физиологии и патологии дыхания.
  8. 8. Ломако В.В. 2018. Влияние разных режимов охлаждения (краниоцеребральной и иммерсионной гипотермии, поверхностных ритмических и экстремальных холодовых воздействий) на лейкоцитарные показатели крови крыс // Проблемы криобиологии и криомедицины. № 28(4). С. 293.
  9. 9. Мухомедзянова С.В., Пивоваров Ю.Н., Богданова О.В. и др. 2017. Липиды биологических мембран в норме и патологии (Обзор литературы) // Acta Biomedica Scientifica. Т. 2. № 5. Ч. 1. С. 43.
  10. 10. Новицкий В.В., Рязанцева Н.В., Степовая Е.А. 2004. Физиология и патофизиология эритроцита. Томск: Изд-во Томск. ун-та.
  11. 11. Панкова Н.Б. 2020. Механизмы срочной и долговременной адаптации // Патогенез. Т. 18. № 3. С. 77.
  12. 12. Пруцкова Н.П., Селиверстова Е.В., Кутина А.В. 2023. Влияние изменений водно-солевого баланса на ионо- и осморегулирующую функции почек у озерной лягушки // Лабораторные животные для научных исследований. Т. 6. № 3. С. 44. https://doi.org/10.57034/2618723X-2023-03-03
  13. 13. Саидов М.Б., Халилов Р.А. 2013. Структурно-динамические параметры мембран эритроцитов при гипотермии и введении даларгина // Успехи современного естествознания. № 11. С. 73.
  14. 14. Силс Е.А. 2008. Сравнительный анализ гематологических показателей остромордой (Rana arvalis Nilsson, 1842) и озерной (Rana ridibunda Pallas, 1771) лягушек городских популяций // Вестн. Оренбург. гос. ун-та. № 10(92). С. 230.
  15. 15. Скоркина М.Ю., Федорова М.З., Чернявских С.Д. и др. 2011. Сравнительная оценка морфофункциональных характеристик нативных и фиксированных эритроцитов // Цитология. Т. 53. № 1. С. 17.
  16. 16. Смирнов Л.П., Богдан В.В. 2006. Температурная преадаптация эктотермных организмов разной организации: роль жирно-кислотного состава липидов // Журн. эвол. биохим. и физиол. Т. 42. № 2. С. 110.
  17. 17. Солдатов А.А. 2023. Случаи спонтанного роста концентрации метгемоглобина в крови костистых рыб на протяжении годового цикла // Биология внутр. вод. № 4. С. 549. https://doi.org/10.31857/S032096522304023X
  18. 18. Федоpова М.З., Павлов Н.А., Зубаpева Е.В. и др. 2008. Использование атомно-силовой микроскопии для оценки морфометрических показателей клеток крови // Биофизика. Т. 53. № 6. С. 1014.
  19. 19. Чернявских С.Д., Недопекина С.В. 2013. Сезонные колебания относительной микровязкости, полярности и сорбционной способности эритроцитарных мембран Cyprinus carpio и Rana ridibunda // Науч. ведомости БелГУ. Серия Естественные науки. № 3(146). Вып. 22. С. 99.
  20. 20. Чернявских С.Д., До Хыу Кует, Во Ван Тхань. 2018. Влияние температуры на морфометрические и физические показатели эритроцитов и полиморфно-ядерных лейкоцитов Carassius gibelio (Bloch) // Биология внутр. вод. № 1. С. 95. https://doi.org/10.7868/S0320965218010126
  21. 21. Шаповалова К.В. 2020. Адаптивные реакции костного мозга и развитие окислительного стресса у прудовых и озерных лягушек, обитающих в различных гидрохимических условиях среды: Автореф. дис …. на соискание ученой степени канд. биол. наук. Нижний Новгород. 23 с.
  22. 22. Ямщиков Н.В., Косов А.И., Суворова Г.Н., Кудрова В.А. 2007. Гистофизиология системы крови (цитоморфология, гемоцитопоэз, органы кроветворения и иммунной защиты) пособие. Самара: Изд-во Офорт.
  23. 23. Bhattacharyya K., Guha T., Bhar R. et al. 2004. Atomic force microscopic studies on erythrocytes from an evolutionary perspective // Anat. Rec. a Discov. Mol. Cell. Evol. Biol. V. 279. № 1. P. 671. https://doi.org/10.1002/ar.a.20057
  24. 24. Chernyavskikh S.D., Vo Van Thanh, Erina T.A. et al. 2016. Morphofunctional indices of erythrocytes and polymorphonuclear leukocytes Rana ridibunda Pall. under the influence of temperature factor // Int. J. Pharmacy and Technol. V. 8(2). P. 14 486.
  25. 25. Erken G., Erken H.A., Bor-Kucukatay M.T. et al. 2011. The effects of in vivo and ex vivo various degrees of cold exposure on erythrocyte deformability and aggregation // Med. Sci. Moni. № 17(8). P. 210.
  26. 26. Deveci D., Egginton S. 2001. Differential effect of cold acclimation on blood composition in rats and hamsters // J. Comp. Physiol. B: Biochemical, Systemic, and Environmental Physiol. № 171. P. 135.
  27. 27. Insall R.H., Machesky L.M. 2009. Actin dynamics at the leading edge: From simple machinery to complex networks // Dev. Cell. V. 17. № 3. P. 310. https://doi.org/10.1016/j.devcel.2009.08.012
  28. 28. Itoh T., Takenawa T. 2009. Mechanisms of membrane deformation by lipid-binding domains // Prog. Lipid. Res. V. 48. № 5. P. 298. https://doi.org/10.1016/j.plipres.2009.05.002
  29. 29. Kregel K.C. 2002. Invited review: Heat shock proteins: modifying factors in physiological stress responses and acquired thermotolerance // J. Appl. Physiol. G. V. 92. № 5. P. 2177. https://doi.org/10.1152/japplphysiol.01267.2001
  30. 30. McMahon H.T., Gallop J.L. 2005. Membrane curvature and mechanisms of dynamic cell membrane remodeling // Nature. V. 438(7068). P. 590. https://doi.org/10.1038/nature04396
  31. 31. Svedentsov E.P., Chtcheglova O.O., Tumanova T.V., Solomina O.N. 2006. Conservation leukocytes in the conditions of cryoanabiosis (–40оС) // J. Stress Physiol. & Biochem. V. 2(1). P. 28.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека