- PII
- S3034522725060105-1
- DOI
- 10.7868/S3034522725060105
- Publication type
- Article
- Status
- Published
- Authors
- Volume/ Edition
- Volume 18 / Issue number 6
- Pages
- 1113-1128
- Abstract
- The functional-trophic structure of benthic invertebrates of the Krutaya Kacha River was studied. A visual analysis of food boluses and an analysis of fatty acids of the dominant species of macroinvertebrates were conducted. The results obtained for the Krutaya Kacha River confirmed the high importance of benthic invertebrates in the decomposition of allochthonous organic matter. The results obtained on the ratio of functional-trophic groups of invertebrates of the Krutaya Kacha River are consistent with the River Continuum Concept.
- Keywords
- макрозообентос концепция речного континуума анализ пищевых комков маркерные жирные кислоты спектр питания
- Date of publication
- 26.03.2025
- Year of publication
- 2025
- Number of purchasers
- 0
- Views
- 32
References
- 1. Барков Д.В., Курашов Е.А. 2011. Состав пищи и скорость питания байкальского вселенца Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) в Ладожском озере // Биология внутр. вод. № 3. С. 51.
- 2. Барышев И.А. 2017. Таксономический состав и трофическая структура бентофауны пороговых участков рек Республики Карелия и Мурманской области // Биология внутр. вод. № 4. С. 50. https://doi.org/10.7868/S0320965217040064
- 3. Барышев И.А., Веселов А.Е. 2007. Сезонная динамика бентоса и дрифта беспозвоночных организмов в некоторых притоках Онежского озера // Биология внутр. вод. № 1. С. 80.
- 4. Богатов В.В., Федоровский А.С. 2017. Основы речной гидрологии и гидробиологии. Владивосток: Дальнаука.
- 5. Воробьева Л.В., Решетов И.С., Азовский А.И. и др. 2020. Закономерности распределения макрозообентоса в некоторых реках Европейской части России и сопредельных территорий // Зоол. журн. Т. 99. № 8. С. 843. https://doi.org/10.31857/S0044513420030149
- 6. Живоглядова Л.А. 2011. Видовая и трофическая структура макрозообентоса р. Лазовая (о-в Сахалин) в весенний период // Чтения памяти Владимира Яковлевича Леванидова. № 5. С. 165.
- 7. Калачева Г.С., Сущик Н.Н., Гладышев М.И., Махутова О.Н. 2009. Сезонная динамика состава жирных кислот липидов водного мха Fontinalis antipyretica, собранного в реке Енисей // Физиология растений. Т. 56. № 6. С. 879.
- 8. Кормилец О.Н. 2019. Жирные кислоты в трофических сетях экосистем внутренних вод: Дис… на соискание ученой степени докт. биол. наук. Красноярск: ФГАОУ ВО.
- 9. Кочарина С.Л. 2005. Трофическая структура беспозвоночных некоторых водотоков бассейна реки Правая Соколовка (Верхнеуссурийский стационар, Приморский край) // Чтения памяти Владимира Яковлевича Леванидова. № 3. С. 49.
- 10. Крылова Ю.В., Курашов Е.А., Протопопова Е.В. и др. 2024. Состав низкомолекулярного метаболома Potamogeton perfoliatus (Potamogetonaceae) как индикатор трансформации экологического состояния литоральной зоны // Биология внутр. вод. Т. 17. № 4. С. 555. https://doi.org/10.31857/S0320965224040048
- 11. Лепнева С.Г. 1964. Фауна СССР. Ручейники. Т. 2. Вып. 2: Личинки и куколки подотряда кольчатощупиковых (Annulipalpia). М.: Наука.
- 12. Лепнева С.Г. 1966. Фауна СССР. Ручейники. Т. 2. Вып. 1: Личинки и куколки подотряда цельнощупиковых (Integripalpia). М.: Наука.
- 13. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах (зообентос и его продукция). 1983. Л.: ГосНИОРХ. АН СССР. Зоол. ин-т.
- 14. Монаков А.В. 1998. Питание пресноводных беспозвоночных. М.: Ин-т проблем экологии и эволюции.
- 15. Определитель пресноводных беспозвоночных Европейской части СССР. 1977. Л.: Гидрометеоиздат.
- 16. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. 1994. Т. 1: Низшие беспозвоночные. СПб.: Наука.
- 17. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. 1995. Т. 2: Ракообразные. СПб.: Наука.
- 18. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. 1997. Т. 3: Паукообразные. Низшие насекомые. СПб.: Наука.
- 19. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. 1999. Т. 4: Двукрылые насекомые. СПб.: Наука.
- 20. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. 2001. Т. 5: Высшие насекомые. СПб.: Наука.
- 21. Определитель насекомых Дальнего Востока России. 2006. Т. 5: Двукрылые и блохи. Ч. 4. Владивосток: Дальнаука.
- 22. Панкратова В.Я. 1970. Личинки и куколки комаров подсемейства Orthocladiinae фауны СССР (Diptera, Chironomidae=Tendipedidae). Л.: Наука.
- 23. Панкратова В.Я. 1983. Личинки и куколки комаров подсемейства Chironominae фауны СССР (Diptera, Chironomidae=Tendipedidae). Л.: Наука.
- 24. Ресурсы поверхностных вод СССР: Гидрологическая изученность. 1967. Т. 16. Ангаро-Енисейский район. Вып. 1. Енисей. Л.: Гидрометеоиздат.
- 25. Руководство по изучению питания рыб в естественных условиях. 1961. М.: Изд-во Академии наук СССР.
- 26. Тесленко В.А., Жильцова Л.А. 2009. Определитель веснянок (Insecta, Plecoptera) России и сопредельных стран. Имаго и личинки. Владивосток: Дальнаука.
- 27. Ahlgren G., Gustafsson I.B., Boberg M. 1992. Fatty acid content and chemical composition of freshwater microalgae // J. Phycol. V. 28(1). P. 37. https://doi.org/10.1111/j.0022-3646.1992.00037.x
- 28. Arens W. 1994. Striking convergence in the mouthpart evolution of stream-living algae grazers // J. Zool. System. and Evol. Res. V. 32(4). P. 319. https://doi.org/10.1111/j.1439-0469.1994.tb00490.x
- 29. Balibrea A., Ferreira V., Balibrea C. et al. 2020. Contribution of macroinvertebrate shredders and aquatic hyphomycetes to litter decomposition in remote insular streams // Hydrobiologia. V. 847. P. 2337. https://doi.org/10.1007/s10750-020-04259-1
- 30. Bellou S., Baeshen M.N., Elazzazy A.M. et al. 2014. Microalgal lipids biochemistry and biotechnological perspectives // Biotechnol. Advances. V. 32. P. 1476. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2014.10.003
- 31. Bogatov V.V., Sushchik N.N., Makhutova O.N. et al. 2021. Allochthonous and autochthonous food sources for zoobenthos in a forest stream // Rus. J. Ecol. V. 52(3). P. 253. https://doi.org/10.1134/S1067413621030048
- 32. Bogatov V.V., Sushchik N.N., Kolmakova A.A., Gladyshev M.I. 2024. Allochthonous versus autochthonous carbon subsidies in small river food webs depend on seasonality and riparian tree species // Aquat. Sci. V. 86. P. 41. https://doi.org/10.1007/s00027-024-01060-3
- 33. Breuer G., Evers W.A.C., de Vree J.H. et al. 2013. Analysis of fatty acid content and composition in microalgae // J. Vis. Exp. Article number: e50628. https://doi.org/10.3791/50628
- 34. Caramujo M.-J., Boschker H.T.S., Admiraal W. 2008. Fatty acid profiles of algae mark the development and composition of harpacticoid copepods // Freshwater Biol. V. 53. P. 77. https://doi.org/10.1111/j.1365-2427.2007.01868.x
- 35. Christie W.W., Han X. 2010. Lipid analysis: isolation, separation, identification and lipidomic Analysis. Bridgwater: The Oily Press.
- 36. Cummins K.W. 1973. Trophic relations of aquatic insects // Ann. review of entomol. V. 18(1). P. 183.
- 37. Cummins K.W., Klug M.J. 1979. Feeding ecology of stream invertebrates // Annual Rev. Ecol. and Syst. V. 10. P. 147.
- 38. Cummins K.W. 2016. Combining taxonomy and function in the study of stream macroinvertebrates // J. Limnol. V. 75. P. 235. https://doi.org/10.4081/jlimnol.2016.1373
- 39. Cummins K.W. 2018. Functional analysis of stream macroinvertebrates // Limnology-Some New Aspects Inland Water Ecol. V. 1. P. 16. https://doi.org/10.5772/intechopen.79913
- 40. Desvilettes C., Bourdier G., Amblard C., Barth B. 1997. Use of fatty acids for the assessment of zooplankton grazing on bacteria, protozoans and microalgae // Freshwater Biol. V. 38. P. 629. https://doi.org/10.1046/j.1365-2427.1997.00241.x
- 41. Dijkman N.A., Kromkamp J.C. 2006. Phospholipid-derived fatty acids as chemotaxonomic markers for phytoplankton: application for inferring phytoplankton composition // Mar. Ecol. Progress Ser. V. 324. P. 113. https://doi.org/10.3354/meps324113
- 42. Dodson V.J., Dahmen J.L., Mouget J.-L., Leblond J.D. 2013. Mono- and digalactosyldiacylglycerol composition of the marennine-producting diatom, Haslea ostrearia: Composition to a selection of pinnate and centric diatoms // Phycol. Res. V. 61. P. 199. https://doi.org/10.1111/pre.12015
- 43. Fenoglio S., Tierno de Figueroa J.M., Doretto A. et al. 2020. Aquatic insects and benthic diatoms: a history of biotic relationships in freshwater ecosystems // Water. V. 12(10). P. 2934. https://doi.org/10.3390/w12102934
- 44. Findlay R.H., Dobbs F.C. 1993. Quantitative description of microbial communities using lipid analysis // Handbook of methods in aquatic microbial ecology. Boca Raton: Lewis Publ. P. 271.
- 45. Fontaneto D., Tommaseo-Ponzetta M., Galli C. et al. 2011. Differences in fatty acid composition between aquatic and terrestrial insects used as food in human nutrition // Ecol. Food and Nutrition. V. 50(4). P. 351. https://doi.org/10.1080/03670244.2011.586316
- 46. Guevara M., Bastardo L., Cortez R. et al. 2011. Rhodomonas salina (Cryptophyta) pastes as feed for Brachionus plicatilis (Rotifera) // Revista de Biologia Tropical. V. 59(4). P. 1503.
- 47. Gugger M., Lyra C., Suominen I. et al. 2002. Cellular fatty acids as chemotaxonomic markers of the genera Anabaena, Aphanizomenon, Microcystis, Nostoc and Planktothrix (cyanobacteria) // Int. J. Syst. and Evol. Microbiol. V. 52. P. 1007. https://doi.org/10.1099/00207713-52-3-1007
- 48. Hixson S.M., Sharma B., Kainz M.J. et al. 2015. Production, distribution, and abundance of long-chain omega-3 polyunsaturated fatty acids: A fundamental dichotomy between freshwater and terrestrial ecosystems // Environ. Review. V. 23. P. 414. https://doi.org/10.1139/er-2015-0029
- 49. Kalachova G., Gladyshev M., Sushchik N., Makhutova O. 2011. Water moss as a food item of the zoobenthos in the Yenisei River // Open Life Sci. V. 6(2). P. 236. https://doi.org/10.2478/s11535-010-0115-0
- 50. Komagata K., Suzuki K.I. 1988. Lipid and cell-wall analysis in bacterial systematics // Methods in Microbiology. V. 19. P. 161. https://doi.org/10.1016/S0580-9517 (08)70410-0
- 51. Labed-Veydert T., Koussoroplis A.M., Bec A., Desvilettes C. 2021. Early spring food resources and the trophic structure of macroinvertebrates in a small headwater stream as revealed by bulk and fatty acid stable isotope analysis // Hydrobiologia. V. 848(21). P. 5147. https://doi.org/10.1007/s10750-021-04699-3
- 52. Le Bodelier P.L., Gillisen M.J.B., Hordijk K. et al. 2009. A reanalysis of phospholipid fatty acids as ecological biomarkers for methanotrophic bacteria // The ISME journal. V. 3. P. 606. https://doi.org/10.1038/ismej.2009.6
- 53. Makhutova O.N., Mashonskaya Y.O., Borisova E.V. et al. 2025. Fatty acid flux disparities between aquatic and terrestrial ecosystems in a shaded river can alter the nutritional content of consumer resources // Aquat. Sci. V. 87. P. 39. https://doi.org/10.1007/s00027-025-01164-4
- 54. Makhutova O.N., Shulepina S.P., Sharapova T.A. et al. 2016. Content of polyunsaturated fatty acids essential for fish nutrition in zoobenthos species // Freshwater Sci. V. 35. P. 1222. https://doi.org/10.1086/688760
- 55. Makhutova O.N., Sushchik N.N., Gladyshev M.I. 2022. Fatty acid – Markers as foodweb tracers in inland waters // Encyclopedia of Inland Waters. 2nd ed. V. 4. Amsterdam: Elsevier. P. 713. https://doi.org/10.1016/ B978-0-12-819166-8.00094-3
- 56. Merritt R.W., Cummins K.W., Berg M.B. 2017. Trophic relationships of macroinvertebrates // Methods in stream ecology. V. 1. L.: Acad. Press. P. 413.
- 57. Mihuc T.B. 1997. The functional trophic role of lotic primary consumers: generalist versus specialist strategies // Freshwater Biol. V. 37(2). P. 455. https://doi.org/10.1046/j.1365-2427.1997.00175.x
- 58. Muller-Navarra D.C. 1995. Biochemical versus mineral limitation in Daphnia // Limnol., Oceanogr. V. 40. P. 1209. https://doi.org/10.4319/lo.1995.40.7.1209
- 59. Napolitano G.E. 1999. Fatty acids as trophic and chemical markers in freshwater ecosystems // Lipids in freshwater ecosystems. N.Y.: Springer. P. 21.
- 60. Navarrete A., Peacock A., Macnaughton S.J. et al. 2000. Physiological status and community composition of microbial mats of Ebro delta, Spain, by signature lipids // Microbiol. Ecol. V. 39. P. 92. https://doi.org/10.1007/s002489900185
- 61. Nielsen J.M., Clare E.L., Hayden B. et al. 2018. Diet tracing in ecology: method comparison and selection // Methods in Ecology and Evolution. V. 9. P. 278. https://doi.org/10.1111/2041-210X.12869
- 62. Petkov G., Garcia G. 2007. Which are fatty acids of the green alga Chlorella? // Biochemical Systematics and Ecology. V. 35. P. 281. https://doi.org/10.1016/j.bse.2006.10.017
- 63. Petrov K.A., Dudareva L.V., Nokhsorov V.V. et al. 2020. Fatty acid content and composition of the yakutian horses and their main food source: living in extreme winter conditions // Biomolecules. V. 10. P. 315. https://doi.org/10.3390/biom10020315
- 64. Rezende R.S., Moncao F.S., Goncalves Junior J.F., Santos A.M. 2019. Macroinvertebrate associated with macrophyte beds in a Cerrado stream // Limnetica. V. 38(2). P. 639. https://doi.org/10.23818/limn.38.37
- 65. Rosi-Marshall E.J., Wellard Kelly H.A., Hall Jr.R.O., Vallis K.A. 2016. Methods for quantifying aquatic macroinvertebrate diets // Freshwater Sci. V. 35(1). P. 229. https://doi.org/10.1086/684648
- 66. Shaw N. 1974. Lipid composition as a guide to the classification of bacteria // Advances in Appl. Microbiol. V. 17. P. 63. https://doi.org/10.1016/S0065-2164 (08)70555-0
- 67. Shorland F.B. 1963. The distribution of fatty acids in plant lipids // Chemical Plant Taxonomy. L.: Acad. Press. P. 253.
- 68. Taipale S., Strandberg U., Peltomaa E. et al. 2013. Fatty acid composition as biomarkers of freshwater microalgae: analysis of 37 strains of microalgae in 22 genera and in seven classes // Aquat. Microb. Ecol. V. 71. P. 165. https://doi.org/10.3354/ame01671
- 69. Tierno de Figueroa J.M., Lopez-Rodriguez M.J., Villar-Argaiz M. 2019. Spatial and seasonal variability in the trophic role of aquatic insects: an assessment of functional feeding group applicability // Freshwater Biol. V. 64(5). P. 954. https://doi.org/10.1111/fwb.13277
- 70. Van Dooremalen C., Pel R., Ellers J. 2009. Maximized PUFA measurements improve insight in changes in fatty acid composition in response to temperature // Archives of Insect Biochemistry and Physiology. V. 72. P. 88. https://doi.org/10.1002/arch.20325
- 71. Vannote R.L., Minshall G.W., Cummins K.W. et al. 1980. The River Continuum Concept // Can. J. Fish and Aquat. Sci. V. 37(1). P. 130. https://doi.org/10.1139/f80-017
- 72. Viso A.C., Marty J.C. 1993. Fatty acids from 28 marine microalgae // Phytochemistry. V. 34. P. 1521. https://doi.org/10.1016/S0031-9422 (00)90839-2
- 73. Wang J., Li J., Dasgupta S. et al. 2014. Alterations in membrane phospholipid fatty acids of gram-positive piezotolerant bacterium Sporosarcina sp. DSK25 in response to growth pressure // Lipids. V. 49. P. 347. https://doi.org/10.1007/s11745-014-3878-7